INSECTOS PARASITOIDES

Se calcula que aproximadamente el 10% de las especies descritas de insectos son parasitoides (ver definición). Hay más de 60 familias de insectos parasitoides pertenecientes a seis órdenes:

ORDEN HYMENOPTERA

Los parasitoides ocurren en al menos 36 familias de Hymenoptera pero los de mayor importancia para el control biológico pertenecen a dos superfamilias, Chalcidoidea e Ichneumonoidea.

" frameborder="0" width="560" height="315">

SUPERFAMILIA CHALCIDOIDEA

• i
• Publicaciones
• webs de interés

i

Incluye 16 familias con parasitoides.  de las cuales Encyrtidae y Aphelinidae han sido usadas más frecuentemente en control biológico. En España existen más de 1.200 especies referenciadas (Ver listado  )

Publicaciones

Los chalcidoidea (Hymenoptera) asociados con agallas de cinípidos (Hymenoptera, Cynipidae) en la Comunidad de Madrid.  J. F. Gómez, M. Hernández Nieves, A. M. Garrido Torres, R. R. Askew y J. L. Nieves-Aldrey.  Graellsia, 62: 293-331, 2006)

  Chalcidoidea (Hym. Apocrita, Terebrantia) en plantas hortícolas de la Comunidad Valenciana. M. J. Verdú.  (Boln.Asoc. esp. Ent., 15: 1991: 245-255)

  Calcidoideos (Hym., Chalcidoidea) asociados a agallas de Aylacini y Diplolepidini (Hym., Cynipidae) en España. José Luis Nieves-Aldrey & R.R.Askew.  (Boln. Asoc. esp. Ent., 26 (1-2): 2002)

webs de interés

• Universal Chalcidoidea Database

• Parasitic Hymenoptera Research Laboratory, Texas A&M University

• http://www.sel.barc.usda.gov/hym/chalcid.html

• PTEROMALIDAE

• i
• publicaciones
• web de interés
• Media

i

Los pteromálidos son más de 3450 especies agrupadas en 640 géneros, todos parásitos. Atacan un amplio rango de hospedadores. Por ejemplo: Las pupas de moscas muscoideas, escar­abajos barrenadores de madera o avispas que anidan en tallos o en lodo son ataca­das por los Cleonyminae Las moscas Agromyzidae, Cecidomyiidae, Tephritidae y Anthomyiidae por Miscogastrini Diversos Lepidoptera, Coleoptera, Diptera e Hymenoptera por Pteromalinae. Algunas especies de Muscidifurax y Spalangia son criadas para liberaciones aumentativas contra moscas que se crían en estiércol (Patterson et al., 1981).

publicaciones

CATÁLOGOS

•   Catálogo actualizado de los pteromálidos de la Península ibérica e Islas Baleares (Hym., Chalcidoidea, Pteromalidae).

GARRIDO TORRES, A.M. & NIEVES-ALDREY, J.L., 1990   (Catàleg especies ibèriques. )
Boletin de la Asociation Española de Entomologia, 14: 71-87

• Pteromálidos de la Comunidad de Madrid: faunística y catálogo (Hymenoptera, chalcidoidea, pteromalidae)

A. M. GARRIDO TORRES Y J. L. NIEVES-ALDREY

Graellsia, 55: 9-147 (1999)

• The Pteromalidae of North-Western Europe.

GRAHAM, M.W.R. de V., 1969
Bulletin of the British Museum. Entomology, Supplement 16

CLAVES DE IDENTIFICACIÓN

• Illustrated key to West-Palaearctic genera of Pteromalidae (Hymenoptera: Chalcidoidea).

BOUCEK,Z. & RASPLUS, J.-Y., 1991
Institut National de la Recherche Agronomique, Paris, 140 pp.

• Keys to the insects of the European part of the Ussr. Chalcidoidea.

MEDVEDEV, G.S. (Ed.), 1978, Trad.1987
Vol.III. Pt.2 (Chalcidoidea)

• Keys to the chalcidoidea of Czechoslovakia.

PECK, O., BOUCEK, Z. & HOFFER, A., 1964
Memoirs of the Entomological Society of Canada, no.34

 

CONTROL BIOLÓGICO

• Parámetros poblacionales de muscidifurax raptor girault and Sanders (hymenoptera: pteromalidae) sobre pupas de musca Domestica l. (díptera: muscidae)

D. C. CRESPO, F. R. LA ROSSA, R. E. LECUONA

Bol. San. Veg. Plagas, 29: 243-248, 2003

•   The preimaginal stages and development of Spalangia cameroni Perkins (Hymenoptera: Pteromalidae) on Ceratitis capitata (Wiedemann)(Diptera: Tephritidae)

JOSÉ TORMOS, FRANCISCO BEITIA, ELIAS A. BÖCKMANN, JOSEP D. ASÍS

journal homepage: www.elsevier.com/locate/micron

web de interés

• Clave de identificación de las subfamilias (MicroHYMENOPTERS DE PONENT)
• Universal Chalcidoidea Database

 

Media

 " frameborder="0" width="480" height="360">

• ENCYRTIDAE

• EULOPHIDAE

• i
• publicaciones

i

Euplectrus , Cocoons on host caterpillar. Photo & © Mark R. Shaw

Esta familia es de gran importancia para el control biológico, atacando una amplia variedad de hospedadores, incluyendo coccinélidos, trips y especies de Coleoptera, Lepidop­tera, Diptera e Hymenoptera. Al­gunas especies atacan minadores de hojas o insectos barrenadores de madera. En España se comercializa  Dighiphus Isaea muy útil en el control biológico de distintas especies de minadores foliares. También existe un creciente interés por el empleo en programas de control biológico de la polilla del tomate (Tuta abasoluta) de otro eulófido de distribución mediterránea: Necremnus artynes

publicaciones

Contribución al conocimiento de los eulófidos (Hym., Chalcidoidea, Eulophidae) parásitos en las agallas de cinípidos producidas sobre especies de Quercus.   ]. L. Nieves Aldrey. (Boletín Asoc. esp. Entom. - Vol. 7: páginas 43 - 54. Salamanca, noviembre 1983)

Parasitismo de Pnigalio sp. Schrank (Hymenoptera: Eulophidae) sobre Phyllocnistis citrella Stainton (Lepidoptera: Phyllocnistidae) en cítricos del área metropolitana de Sevilla.  Y. CABEZAS, M. A. CASAÑAS, I. C. FERNÁNDEZ, P. MARTÍN y M. E. OCETE.   ( Bol. San. Veg. Plagas, 24: 175-182, 1998)

Primera cita del parasitoide Thripobius semiluteus Boucek (Hymenoptera: Eulophidae) en España.  A. Belrá, A. Soto,  (Bol. San. Veg. Plagas, 37:3-8, 2011)

  Primera cita de Closterocerus chamaeleon Girault (Hymenoptera: Eulophidae), parasitoide de Ophelinus maskelli Ashncad (Hymenoptera, Eulophidae) en la provincia de Huelva (SO España).  P Borrajo, M. A. López, R. Ecete, F. Ruiz.  (Bol. San. Veg. Plagas, 34: 383-385, 2008)

  Baryscapus transversalis Graham, 1991 (Hymenoptera, Chalcidoidea, Eulophidae), nuevo hiperparasitoide asociado a la procesionaria del pino en la Península Ibérica,   E. López-Sebastián , J. Selfa , j. Pujade-Villar & M. J. Juan-Martínez,  (Zool. baetica, 13/14: 243-245, 2002-2003 Universidad de Granada)

  Biología de Cirrospilus sp. próximo a lyncus (hym: eulophidae), extoparasitoide del minador de las hojas de los cítricos, Phyllocnistis citrella stainton (lep.: gracillariidae). dinámica e impacto de los enemigos naturales del minador. TESIS DOCTORAL. Urbaneja García, Alberto.  (Universidad de Valencia, Marzo 2003)

Ciclo biológico de Cirrospilus próximo a lyncus, parasitoide autóctono del minador de las hojas de los cítricos.  A. Urbaneja, E. Llácer, J. Jacas , A. Garrido.  (Bol. San. Veg. Plagas, 24: 707-714, 1998)

Cria en laboratorio de Tetrastichus turionum (Hymenoptera: Eulophidae), un parasitoide de crisálidas de Rhyacionia buolina (Lepidoptera: Tortricidae).  A. Huerta. F. Robredo, J. Díez, J. A. Pajares.  (Bol. San. Veg. Plagas, 33. 169-177, 2007)

  Sistema de cría del minador de las hojas de los cítricos, Phyllocnistis citrella Stainton y sus parasitoides Cirrospilus próximo a lyncus y Quadrastichus sp.   A. Urbaneja, E. Llácer, R. Hinarejos, J. Jacas, A. Garrido. (Bol. San. Veg. Plagas, 24: 787-796, 1998)

  Algunos aspectos del superparasitismo de Diglyphus isaea (Walker, 1838).  F. BEITIA, J. TORMOS y A. GARRIDO.  (Bol. San. Veg. Plagas, 20: 793-796, 1994).

Presencia de un eulófido parasitoide de Sphaeroderma rubidum Graells en el cultivo del cardo (Cynara cardunculus L.).   C. Iglesias, J. Sinobas, L. Varés. (Bol. San. Veg. Plagas, 25: 499-504, 1999). 

• APHELINIDAE

Los miembros de esta familia son importantes parasitoides de cochinilla algodonosa, mosca blancas áfidos, psíli­dos y huevos de diversos insectos. Los géneros de mayor importan­cia incluyen a Aphelinus, Aphytis, Encarsia y Eretmocerus (Rosen y DeBach, 1979). Aphytis melinus DeBach (Figura 3-6) controló el piojo rojo de California Aonidi­ella aurantii (Maskell) en cítricos. Viggiani (1984) revisó la ecología de los Aphelinidae. Algunas espe­cies como Encarsia formosa Ga­han y Eretmocerus eremicus Rose & Zolnerowich son criadas ma­sivamente para ser usadas contra moscas blancas en cultivos en in­vernadero.

• TRICHOGRAMMATIDAE

Todos los tricogramátidos son parasitoides de huevos. Los nombres de las espe­cies en la literatura anterior a 1970 a menudo están incorrectos, debido a la dificultad para la identificación exacta de las especies sin herramientas basadas en el ADN (Pinto y Stouthamer, 1994). Unas diez especies de Trichogramma han sido criadas extensamente en masa para liberaciones aumentativas contra lepidópteros plaga en maíz, algodón y otros cultivos.

• MYMARIDAE

Todos los mimáridos son parasitoides de hue­vos, y atacan especies de Hemiptera, Psocop­tera, Coleoptera, Diptera y Orthoptera. La liberación de Anaphes flavipes (Förster) en los Estados Unidos ayudó a suprimir al escar­abajo de la hoja de los cereales Oulema mela­nopus (L.) (Maltby et al., 1971). Gonatocerus ashmeadi Girault controló a la chicharrita de alas cristalinas Homalodisca co­agulata Say en la Polinesia Francesa.

SUPERFAMILIA PROCTOTRUPOIDEA

incluye Scelionidae y Platygasteridae, las cuales son familias de interés en control biológico.

• SCELIONIDAE

Todas las especies de esta gran familia son par­asitoides de huevos, y algunos como Trissolcus basalis (Wollaston), parasitoide de la chinche verde apestosa N. viridula (Jones, 1988), han sido usados en cotrol biológico. Otros géne­ros importantes son Telenomus y Scelio.

  Parasitismo natural de huevos de crisópidos por el parasitoide Telenomus acrobates Giard (Hymenoptera: Scelionidae).  S. Pascual, M. J. Verdú, A. A. acas, A. Urbaneja.  (Bol. San. Veg. Plagas, 33: 65-68, 2007)

SUPERFAMILIA ICHNEUMONOIDEA

La superfamilia Ichneumonoidea está compuesta por Ichneumonidae y Braconidae. La subfamilia Aphidiinae a veces es elevada a nivel de familia pero aquí se incluye en Braco­nidae.

• ICHNEUMONIDAE

Los miembros de esta gran familia (Townes, 1969; Yu y Horstmann, 1997) parasitan muchos tipos diferentes de hospederos. Mu­chas especies tienen antenas largas y oviposi­tor largo los cuales son visibles todo el tiempo pero en algunos grupos los ovipositores son cortos y no visibles. Las subfamili­as más importantes pueden, en general, ser agrupadas por el tipo de hospedador (según Askew, 1971): ectoparasitoides de larvas o pupas de diversos órdenes en tejido vegetal (Pimplinae, p. ej., Pimpla); ectoparasitoides de larvas expuestas de lepidópteros y moscas sierra (Typhoninae, p. ej., Phytodietus); ectoparasitoides de insectos en capullo – algunos son hiperparasitoides (Cryptinae, p. ej., Gelis); endoparasitoides de larvas de lepidópteros (Banchinae, p. ej., Glypta; Campople­ginae, p. ej., Diadegma; Ophioninae, p. ej., Ophion); endoparasitoides de pupas de lepidópteros (Ichneumoninae, p. ej., Ichneumon); endoparasitoides de larvas de moscas sierra (Ctenopelmatinae, p. ej., Perilissus); y endoparasitoides de larvas de sírfidos (Diplazontinae, p. ej., Diplazon).

" frameborder="0" width="420" height="315">

• BRACONIDAE

Los bracónidos han sido utilizados ampliamente en control biológico, especial­mente contra áfidos, Lepidoptera, Coleoptera y Díptera. A menudo enpupan den­tro de capullos sedosos, fuera del cuerpo de su hospedero; los Aphidiinae enpupan adentro de los pulgones momificados. Wharton (1993) discutió la ecología de Braconidae. Aphidius colemani Viereck se consigue comercialmente para contro­lar áfidos en invernaderos (Figura 3-9). La mayoría de los investigadores recon­ocen de 35 a 40 subfamilias. Las principales subfamilias y tipos de hospederos que atacan (según Askew, 1971 y Shaw y Huddleston, 1991) incluyen endoparasitoides de áfidos (Aphi­diinae, p. ej., Aphidius, Trioxys) (para la biología de este grupo, ver Starý 1970); endoparasitoides de larvas de Lepidoptera y Coleoptera (Meteori­nae, p. ej., Meteorus; Blacinae, p. ej., Blacus; Microgasterinae, p. ej., Co­tesia, Microplitis; Rogadinae, p. ej., Aleiodes); endoparasitoides de escar­abajos adultos o ninfas de Hemiptera (Euphorinae, p. ej., Microctonus); endoparasitoides huevo-larva de Lepidoptera (Cheloninae, p. ej., Che­lonus); endoparasitoides huevo-larva y de larvas de Diptera Cyclorrhapha (Alysiinae, p. ej., Dacnusia; Opiinae, p. ej., Opius); y ectoparasitoides de larvas de lepidópteros y coleópteros en sitios ocultos (Braconinae, p. ej., Bracon; Doryctinae, p. ej., Heterospi­lus).

" frameborder="0" width="420" height="315">

SUPERFAMILIA CHRYSIDOIDEA

La superfamilia Chrysidoidea in­cluye siete familias. Los Bethylidae son los más importantes para el con­trol biológico, aunque varias especies de Dryinidae han sido liberadas contra pla­gas de cultivos y ornamentales.

• BETHYLIDAE

Los bethílidos atacan larvas de escarabajos y de Lepidoptera, a menudo en habi­tats confinados como en hojas enrolladas y debajo de la corteza. Las especies usa­das como agentes de control biológico incluyen parasitoides de la broca del café Hypothenemus hampei (Ferrari) (Abraham et al., 1990), y Goniozus legneri Gordh, la cual controla al pirálido Amyelois transitella (Walker) en huertas de almen­dros (Prunus dulcis [Miller] D.A. Webb var. dulcis) en California (EU) (Legner y Gordh, 1992).

SUPERFAMILIA VESPOIDEA

La superfamilia Vespoidea incluye siete familias con miembros parasíticos: Tiphiidae, Mutillidae, Scoliidae, Bradynobaenidae, Pompilidae, Rhopalosomati­dae y Sapygidae, de los cuales Tiphiidae y Scoliidae son quizas los más importantes en proyectos de control biológico.

• TIPHIIDAE

Los tifíidos son parasitoides de larvas de escarabajos. Las especies de la subfa­milia Tiphiinae barrenan en el suelo y atacan larvas de escarabidos en celdas de tierra. Tiphia popilliavora Rohwer y Tiphia vernalis Rohwer fueron introducidas a los Estados Unidos contra el escarabajo japonés Popillia japonica Newman. Los niveles de parasitismo fueron altos inicialmente pero después declinaron y ambos parasitoides ahora son escasos mientras que su hospedero todavía es abundante (King, 1931; Ladd and McCabe, 1966).

ORDEN DIPTERA

Trece familias de moscas incluyen especies parasíticas de artrópodos o de caracoles (Cecidomyiidae, Acroceridae, Nemestrinidae, Bombyliidae, Phoridae, Pipunculidae, Conopidae, Pyrgotidae, Sciomyzidae, Cryptochetidae, Calliphoridae, Sarcophagidae y Tachinidae) pero las más importantes son Tachinidae, Phoridae y Cryptochetidae. Ver Feener y Brown (1997) para una revisión de los dípteros como parasitoides.

• PHORIDAE

Estas moscas han sido criadas de termitas, abejas, grillos, larvas de Lepidoptera, pupas de polillas y larvas de moscas pero actualmente son de mayor interés como parasitoides de las hormigas de fuego invasoras (Williams y Banks, 1987; Feener y Brown, 1992; Williams et al., 2003; Porter et al., 2004).

• CRYPTOCHETIDAE

Todas las especies pertenecen al género Cryptochetum y todas parasitan cochinillas margaródidas. Cryptochetum iceryae (Williston) fue introducida a California (EU) desde Australia y controla a la cochinilla acanalada algodonosa (Icerya purchasi Maskell), una plaga importante de los cítricos (Bartlett, 1978).

• TACHINIDAE

Éstos son los dípteros más importantes en el control biológico clásico. La mayoría son endoparasitoides solitarios y ninguno es hiperparasítico (Askew, 1971). Lydella thompsoni Herting fue introducida a los Estados Uni­dos para el control del barrenador europeo del maíz Ostrinia nubilalis (Hübner) (Burbutis et al., 1981). En Canadá, la introducción de Cyzenis albicans (Fallén) controló la polilla de invierno invasora Operophtera brumata L. (Embree, 1971). Trichopoda giacomellii (Blanchard) fue introducida en Australia, donde controló una importante plaga de hortalizas, el chinche Nezara viridula (L.) (Coombs y Sands, 2000). Taquínidos como Lixophaga diatraeae (Townsend) han sido usa­dos para liberaciones aumentativas (Bennett, 1971) mientras que otras especies han sido de interés como parasitoides indígenas de plagas nativas como por ejem­plo Bessa harveyi (Townsend), la cual es parasitoide de la mosca sierra del alerce Pristiphora erichsonii (Hartig) (Thompson et al., 1979). Grenier (1988) revisó el papel de los taquínidos en el control biológico aplicado y Stireman et al. (2006) discutieron su evolución, conducta y ecología. Los taquínidos varían en la forma como atacan a sus hospedadores (O’Hara, 1985). Los adultos de algunas especies depositan huevos sobre sus hospedadores o dentro de ellos mientras que otros re­tienen sus huevos y depositan larvas de primer estadío sobre, cerca o dentro de sus hospedadores. Algunas otras colocan huevos o larvas sobre el follaje o el suelo. Los huevos puestos sobre el follaje, son colocados donde es posible que sean con­sumidos más tarde por su hospedador. En tales casos, sustancias volátiles de plantas emitidas como consecuencia del daño producido por herbívoros, pueden atraer a las moscas para ovipositar (Roland et al., 1989). Los huevos puestos sobre el follaje a menudo son muy pequeños (microtipo) y son depositados en números mayores que los huevos más grandes (macrotipo) de las especies que ovipositan directamente sobre sus hospedadores (Askew, 1971).

Los taquínidos varían desde especies casi específicas como T. giacomelli (Sands y Combs, 1999) hasta las extremadamente polífagas como Compsilura concinnata (Meigen), introducida para controlar la polilla gitana Lymantria dispar (L.) y la polilla de cola café (Euproctis chrysorrhoea [L.]) en Norteamérica. Aunque este taquínido logra un control altamente efectivo de la polillas de cola café, también causa un alto grado de mortalidad a polillas nativas del gusano de seda (Saturni­idae) (Boettner et al., 2000).